Saltar al contenido
medico.doctor

Fisiología muscular: sarcómero, contracción y unión neuromuscular

Actualizada el 2 de octubre de 2026 · 5 referencias · Política editorial

El músculo convierte energía química en fuerza y movimiento mediante la interacción cíclica de actina y miosina, controlada por el calcio. Los tres tipos de músculo comparten ese motor molecular, pero difieren en cómo se activan y regulan: el esquelético obedece a la motoneurona a través de la placa motora, el cardíaco a su propio marcapasos y el liso a señales autónomas, hormonales y locales.

Lo esencial

Estructura del músculo esquelético y el sarcómero

El sarcómero relajado y contraídoLos filamentos no cambian de longitud: se deslizan unos sobre otros. Dibujado a escala con filamento grueso de 1,6 µm y fino de 1,0 µm.
Relajado (sarcómero de 2,6 µm)Banda A · 1,6 µmBanda IBanda IZona H2,6 µmContraído (sarcómero de 2,1 µm)Banda A · 1,6 µmBanda IBanda IZona H2,1 µmLa banda A no cambia; se acortan la banda I y la zona H.

Toca una parte del dibujo o elige una de la lista.

El músculo esquelético representa cerca del 40 % del peso corporal. Cada músculo se organiza en fascículos de fibras: células multinucleadas de 10 a 100 µm de diámetro, formadas por la fusión de mioblastos, que pueden recorrer toda la longitud del músculo. Dentro de cada fibra, cientos a miles de miofibrillas están formadas por unidades repetidas, los sarcómeros, que van de un disco Z al siguiente.

Con el microscopio de polarización, la superposición ordenada de filamentos produce las bandas: la A (anisótropa, oscura) corresponde al filamento grueso; la I (isótropa, clara) solo tiene filamentos finos; la zona H, en el centro de la A, solo gruesos. Según la teoría del deslizamiento de los filamentos, al contraerse la banda A no cambia y se acortan la banda I y la zona H.

Acoplamiento excitación-contracción

Tríada y acoplamiento excitación-contracciónEl potencial de acción baja por el túbulo T, el DHPR abre mecánicamente el RyR1, el Ca2+ sale del retículo hacia las miofibrillas y la SERCA lo recapta.
Líquido extracelularPotencial de acciónCa²⁺Ca²⁺Retículo sarcoplásmicoSERCACisterna terminalTúbulo TSarcolemaMiofibrillaTroponinaNaranja: DHPR del túbulo T; azul: RyR1 de la cisterna; verde: calsecuestrina.

Toca una parte del dibujo o elige una de la lista.

  1. El potencial de acción de la placa motora recorre el sarcolema (dura de 1 a 5 ms) y penetra en la fibra por los túbulos T.
  2. En la tríada, el receptor de dihidropiridina (DHPR, Cav1.1), un canal de Ca2+ tipo L que funciona como sensor de voltaje, cambia de conformación y abre mecánicamente el receptor de rianodina tipo 1 (RyR1) de la cisterna terminal. En el músculo esquelético no hace falta que entre Ca2+ extracelular.
  3. El Ca2+ del retículo sarcoplásmico sale al citosol, donde su concentración pasa de unos 0,1 µmol/L a niveles cien veces mayores o más.
  4. El Ca2+ se une a la troponina C; la troponina I deja de inhibir y la tropomiosina se desplaza del surco y descubre los sitios de la actina donde se une la miosina.
  5. Comienzan los ciclos de puentes cruzados mientras haya Ca2+ y ATP.
  6. Relajación: la SERCA bombea el Ca2+ de vuelta al retículo, donde lo fija la calsecuestrina; las fibras rápidas tienen además parvalbúmina, que lo amortigua en el citosol.

Un solo potencial de acción libera Ca2+ durante pocos milisegundos y produce una sacudida que dura de decenas a más de cien milisegundos, según el tipo de fibra. Como el potencial termina mucho antes que la contracción, los estímulos repetidos pueden sumarse.

Ciclo de los puentes cruzados

Ciclo de los puentes cruzadosCada vuelta consume un ATP y desplaza el filamento fino hacia el centro del sarcómero. Solo ocurre si el Ca2+ unido a la troponina ha descubierto los sitios de la actina.
1. RigorCabeza unida a la actina, sin nucleótido2. Se une el ATPATPLa cabeza se suelta de la actina3. Hidrólisis del ATPADP + PiLa cabeza se arma (90°) y se une más adelante4. Golpe de fuerzaADP(Pi liberado)Sale el Pi: la actina avanza 5–10 nm; luego sale el ADP← hacia la línea M (centro del sarcómero). Violeta: monómero de referencia (compare los pasos 3 y 4).

La cabeza de miosina convierte la energía química del ATP en movimiento en un ciclo de cuatro pasos:

  1. Rigor: la cabeza sin nucleótido está unida firmemente a la actina.
  2. Unión del ATP: disminuye la afinidad por la actina y la cabeza se suelta.
  3. Hidrólisis: el ATP se hidroliza a ADP y fosfato inorgánico (Pi), que quedan unidos; la cabeza gira a la posición «armada» y se une débilmente a un monómero de actina más alejado.
  4. Golpe de fuerza: la liberación del Pi desencadena el giro del brazo de palanca, que desplaza el filamento fino unos 5 a 10 nm hacia la línea M; al final se libera el ADP y la cabeza queda de nuevo en rigor.

El ATP cumple tres funciones en la contracción: separa la miosina de la actina, aporta la energía del golpe de fuerza y alimenta la SERCA (y la Na+/K+-ATPasa que restablece los gradientes). Sin ATP las cabezas quedan fijas en rigor: es la base de la rigidez cadavérica. Las cabezas trabajan de forma asincrónica, de modo que siempre hay algunas unidas y la fuerza es continua. La velocidad de la ATPasa de la miosina, que depende de su isoforma, determina la velocidad máxima de acortamiento de la fibra.

Relaciones longitud-tensión y fuerza-velocidad

Relaciones longitud-tensión y fuerza-velocidadIzquierda: datos clásicos de fibra aislada de rana; en el músculo humano los filamentos finos son algo más largos y la curva se desplaza a la derecha. Derecha: curva de Hill con a/F₀ = 0,25.
0501001,272,02,253,65Longitud del sarcómero (µm)Tensión (% de la máxima activa)ActivaPasivaTotalÓptima: 2,0–2,25 µm(fibra de rana)005050100100Carga (% de la fuerza isométrica F₀)Velocidad (% de Vmáx)VelocidadPotencia máxima (~31 % de F₀)Potencia(escala relativa)Longitud-tensión (isométrica)Fuerza-velocidad (Hill)

En una contracción isométrica el músculo genera fuerza sin acortarse; en una isotónica se acorta contra una carga constante; en una excéntrica se alarga mientras se contrae (bajar una escalera).

Longitud-tensión. La fuerza activa es proporcional al número de puentes cruzados que pueden formarse, es decir, a la superposición entre filamentos. Es máxima en la meseta de longitud óptima, cuando todas las cabezas tienen actina enfrente; cae al estirar el sarcómero (menos superposición, llega a cero cuando los filamentos dejan de solaparse) y también al acortarlo demasiado (los filamentos finos se cruzan en el centro y los gruesos chocan con los discos Z). La tensión pasiva, debida a la titina y al tejido conectivo, aparece al estirar el músculo por encima de su longitud de reposo. In vivo, los músculos trabajan cerca de la longitud óptima.

Fuerza-velocidad. Cuanto mayor es la carga, más lento se acorta el músculo: la velocidad es máxima sin carga y nula cuando la carga iguala la fuerza isométrica máxima (F0). La relación es hiperbólica (ecuación de Hill). La potencia (fuerza × velocidad) es máxima con cargas de cerca de un tercio de F0, lo que explica las marchas de una bicicleta. En la contracción excéntrica el músculo soporta fuerzas mayores que F0 con menor gasto de ATP, pero produce más microlesiones: es la causa del dolor muscular de aparición tardía.

Unidades motoras, sumación y tetania

Una unidad motora es una motoneurona α y todas las fibras que inerva; sus fibras están dispersas en el músculo y se contraen a la vez. Los músculos de control fino (extraoculares, laríngeos, de la mano) tienen unidades de pocas fibras; los grandes músculos posturales y de los miembros, unidades de cientos a miles de fibras. El sistema nervioso gradúa la fuerza de dos maneras:

Las unidades motoras se activan de forma asincrónica, lo que da contracciones suaves aun a frecuencias de descarga bajas. El tono muscular de reposo depende de impulsos de baja frecuencia regulados por los husos musculares. La fatiga resulta de varios factores: acumulación de Pi y H+, menor liberación de Ca2+, depleción de glucógeno y factores centrales.

Tipos de fibras musculares

Las fibras se clasifican por la isoforma de cadena pesada de miosina, que fija la velocidad de su ATPasa, y por su metabolismo. Todas las fibras de una unidad motora son del mismo tipo.

CaracterísticaTipo I (lenta oxidativa)Tipo IIa (rápida oxidativa-glucolítica)Tipo IIx (rápida glucolítica)
Velocidad de contracciónLentaRápidaLa más rápida
Metabolismo principalOxidativoOxidativo y glucolíticoGlucolítico
Mitocondrias, capilares y mioglobinaAbundantes («fibra roja»)IntermediosEscasos («fibra blanca»)
Diámetro y fuerza por unidad motoraPequeñosIntermediosGrandes
Resistencia a la fatigaAltaIntermediaBaja
ReclutamientoPrimeroDespuésAl final (esfuerzos máximos)
Predominan enMúsculos posturales (sóleo)Músculos mixtosEsfuerzos breves e intensos

En el ser humano la fibra rápida glucolítica expresa miosina IIx; la IIb de los roedores es prácticamente ausente. La proporción de tipos es en buena parte genética, pero el entrenamiento la modifica: el de resistencia aeróbica aumenta las mitocondrias y los capilares y desplaza fibras IIx hacia IIa; el de fuerza produce hipertrofia, sobre todo de las fibras tipo II. La denervación, la inmovilización y el envejecimiento (sarcopenia) causan atrofia.

Metabolismo energético del músculo

El ATP almacenado en el músculo alcanza para apenas un par de segundos de contracción máxima. Se regenera por tres sistemas, que se superponen y no se activan en secuencia estricta:

La adenilato cinasa regenera ATP a partir de dos ADP y produce AMP, que activa la AMPK y estimula la captación de glucosa por el GLUT4 de forma independiente de la insulina: por eso el ejercicio mejora la glucemia en la diabetes tipo 2. Tras el ejercicio, el consumo de oxígeno se mantiene elevado (deuda de oxígeno) para reponer la fosfocreatina, el ATP y el glucógeno. La eficiencia mecánica del músculo es menor del 25 %: el resto de la energía se convierte en calor, que contribuye a la termorregulación (escalofríos).

Unión neuromuscular

Unión neuromuscular (placa motora)Las zonas activas del terminal quedan frente a las bocas de los pliegues: receptores nicotínicos en las crestas, canales de Na+ en el fondo.
Potencial de acciónMielinaTerminal axónicoVesículas de AChMitocondriaCanal de Ca²⁺AChE en la lámina basalReceptor nicotínicoCanales de Na⁺Pliegues de unión

Toca una parte del dibujo o elige una de la lista.

  1. El potencial de acción llega al terminal y abre canales de Ca2+ tipo P/Q (Cav2.1) de las zonas activas.
  2. El Ca2+ se une a la sinaptotagmina y el complejo SNARE (sinaptobrevina, sintaxina y SNAP-25) fusiona las vesículas con la membrana: cada impulso libera unas 125 vesículas de unas 10.000 moléculas de acetilcolina (ACh) cada una.
  3. La ACh cruza la hendidura (20 a 30 nm) y se une a los receptores nicotínicos de las crestas de los pliegues: cada receptor necesita dos moléculas para abrir su canal catiónico inespecífico, por el que entra sobre todo Na+.
  4. Se genera el potencial de placa, local y graduado, que despolariza los canales de Na+ (Nav1.4) del fondo de los pliegues y dispara un potencial de acción que se propaga por toda la fibra.
  5. La acetilcolinesterasa hidroliza la ACh en milisegundos; la colina se recapta para sintetizar nueva ACh.

La transmisión es uno a uno: en condiciones normales el potencial de placa supera varias veces el necesario para alcanzar el umbral (factor de seguridad). Las enfermedades de la unión reducen ese margen, por eso producen debilidad fatigable. La liberación espontánea de vesículas aisladas produce potenciales de placa en miniatura, sin contracción.

Músculo liso y músculo cardíaco

Músculo liso. Forma la pared de vasos, vísceras huecas, vías aéreas, útero y vejiga. No tiene sarcómeros: los filamentos finos se anclan a cuerpos densos (equivalentes a los discos Z) y a la membrana, y la célula se acorta en todas direcciones. Su regulación depende de la miosina, no de la troponina:

  1. El Ca2+ sube por entrada a través de canales tipo L y por liberación del retículo mediada por el inositol trifosfato (IP3), estimulada por hormonas y neurotransmisores que actúan sobre receptores acoplados a proteína Gq.
  2. El Ca2+ se une a la calmodulina; el complejo activa la cinasa de la cadena ligera de miosina (MLCK).
  3. La MLCK fosforila la cadena ligera reguladora de la miosina, lo que permite el ciclo de puentes cruzados.
  4. La fosfatasa de la cadena ligera (MLCP) la desfosforila y produce relajación. La Rho-cinasa inhibe la MLCP y aumenta la fuerza sin más Ca2+ (sensibilización al calcio); el óxido nítrico, por GMPc y la proteína cinasa G, activa la MLCP y baja el Ca2+: relaja.

En el estado de cerrojo (latch), los puentes desfosforilados se separan muy despacio y mantienen la tensión con un consumo mínimo de ATP: así se sostiene durante horas el tono vascular o de los esfínteres. El músculo liso unitario (visceral) tiene uniones en hendidura y ondas lentas marcapasos, y se contrae como una unidad; el multiunitario (iris, conducto deferente, piloerectores) depende de la inervación de cada célula.

Músculo cardíaco. Es estriado, con sarcómeros como el esquelético, pero sus células, de un solo núcleo central, se conectan por discos intercalares con desmosomas y uniones en hendidura (conexina 43) y forman un sincitio funcional. En el acoplamiento, el Ca2+ que entra por canales tipo L durante la meseta abre el RyR2 (liberación de Ca2+ inducida por Ca2+); la mayor parte del calcio sale del retículo. No hay reclutamiento ni tetania: la fuerza se gradúa por la cantidad de Ca2+ liberado (inotropismo) y por la longitud del sarcómero (Frank-Starling).

EsqueléticoCardíacoLiso
Estriaciones (sarcómeros)SíSíNo
ControlVoluntario (somático)Autónomo, marcapasos propioAutónomo, hormonal y local
Unión entre célulasNo acopladasDiscos intercalaresUniones en hendidura (unitario)
Disparo del Ca2+DHPR–RyR1 (mecánico)Ca2+ que entra abre RyR2Canales de membrana e IP3
Proteína reguladoraTroponinaTroponinaCalmodulina–MLCK
TetaniaSíNoContracción tónica
RegeneraciónCélulas satéliteMuy limitadaBuena

Valores normales de referencia

ParámetroValor en el adultoNota
Potencial de reposo de la fibra esquelética−80 a −90 mV
Duración del potencial de acción esquelético1–5 msel cardíaco ventricular dura 200–300 ms
Velocidad de conducción en la fibra muscular3–5 m/s
Diámetro de la fibra esquelética10–100 µm
Longitud del filamento grueso1,6 µmigual a la banda A
Longitud del filamento fino≈ 1 µmalgo mayor en el ser humano que en la rana
Longitud óptima del sarcómero2,0–2,25 µmfibra de rana; algo mayor en el ser humano
Desplazamiento por ciclo de puente cruzado5–10 nm
Fuerza máxima por área de sección3–4 kg/cm²
Ca2+ citosólico en reposo≈ 0,1 µmol/L10−7 mol/L
Moléculas de ACh por vesícula≈ 10.000un cuanto
Vesículas liberadas por impulso≈ 125
Ancho de la hendidura sináptica20–30 nm
Energía del ATP almacenado + fosfocreatina8–10 sesfuerzo máximo
Glucólisis anaerobia (glucógeno-lactato)1,3–1,6 minesfuerzo máximo
Eficiencia mecánica< 25 %el resto se libera como calor
Masa muscular esquelética≈ 40 % del peso corporal

Valores orientativos de los tratados de referencia; cada laboratorio fija sus propios intervalos.

Fórmulas y relaciones

Ecuación de Hill (fuerza-velocidad)

(F + a) (v + b) = (F0 + a) · b

F: carga; v: velocidad de acortamiento; F0: fuerza isométrica máxima; a y b: constantes (a/F0 ≈ 0,25).

Potencia muscular

P = F · v

Máxima con F cerca de 0,3 F0 y v cerca de 0,3 Vmáx.

Bandas del sarcómero

Banda I = LS − Lgrueso
Zona H = LS − 2 · Lfino

LS: longitud del sarcómero. Con LS 2,6 µm, grueso 1,6 y fino 1,0 µm: banda I 1,0 µm y zona H 0,6 µm.

Potencial de equilibrio del K<sup>+</sup> (Nernst, 37 °C)

EK = 61,5 · log ([K+]e / [K+]i) mV

Con 4 y 140 mmol/L: unos −95 mV. Explica por qué la hiperpotasemia despolariza el reposo.

Reacción de la creatina cinasa

PCr + ADP + H+ ⇌ Cr + ATP

Amortigua el ATP en los primeros segundos de ejercicio.

Eficiencia mecánica

η = trabajo externo / energía química consumida

Menor del 25 % en el músculo esquelético.

Correlación clínica

Miastenia grave

Anticuerpos contra el receptor nicotínico (o contra MuSK) reducen los receptores funcionales y aplanan los pliegues: el potencial de placa cae por debajo del factor de seguridad tras estímulos repetidos. Debilidad fatigable, ptosis y diplopía; respuesta decreciente en la estimulación repetitiva. Los inhibidores de la acetilcolinesterasa (piridostigmina) mejoran los síntomas.

Síndrome miasténico de Lambert-Eaton

Anticuerpos contra los canales de Ca2+ P/Q presinápticos, a menudo paraneoplásicos (carcinoma pulmonar de células pequeñas): se libera poca ACh. Debilidad proximal con arreflexia y disautonomía; la fuerza mejora transitoriamente con el esfuerzo porque el Ca2+ se acumula en el terminal.

Botulismo

La toxina botulínica escinde proteínas SNARE e impide la exocitosis de ACh: parálisis flácida descendente con pupilas que pueden estar dilatadas. En dosis pequeñas se usa para tratar la espasticidad, la distonía y otras indicaciones.

Hipertermia maligna

Mutaciones del RyR1 (o del DHPR) hacen que los anestésicos halogenados y la succinilcolina provoquen una liberación descontrolada de Ca2+: rigidez, hipercapnia, hipertermia, acidosis, hiperpotasemia y rabdomiólisis. El dantroleno, que bloquea el RyR1, es el tratamiento específico.

Bloqueantes neuromusculares y succinilcolina

Los no despolarizantes (rocuronio, vecuronio) compiten con la ACh por el receptor; se revierten con neostigmina o, en el caso de los aminoesteroides, con sugammadex. La succinilcolina despolariza de forma sostenida la placa e inactiva los canales de Na+. En quemaduras, denervación o inmovilización prolongada proliferan receptores fuera de la placa y puede causar hiperpotasemia grave.

Rabdomiólisis

La lesión de la fibra (trauma, esfuerzo extremo, fármacos, isquemia, hipertermia) libera creatina cinasa, mioglobina, K+ y fosfato. La mioglobina puede causar lesión renal aguda y el K+ arritmias; la creatina cinasa muy elevada confirma el diagnóstico.

Distrofia muscular de Duchenne

La ausencia de distrofina, ligada al cromosoma X, deja el sarcolema frágil ante el estrés de la contracción: necrosis repetida, reemplazo por grasa y fibrosis, seudohipertrofia de las pantorrillas, creatina cinasa muy alta y debilidad proximal progresiva (signo de Gowers).

Preguntas frecuentes

¿Por qué el músculo esquelético se tetaniza y el cardíaco no?

En el esquelético el potencial de acción dura 1 a 5 ms y la sacudida decenas de milisegundos, así que nuevos estímulos llegan con el músculo aún contraído y se suman. En el cardíaco el periodo refractario dura casi toda la contracción, de modo que no puede llegar un nuevo estímulo eficaz antes de la relajación.

¿El ácido láctico causa el dolor muscular del día siguiente?

No. El lactato se elimina en una o dos horas tras el ejercicio. El dolor muscular de aparición tardía, que aparece entre 24 y 72 horas después, se debe a microlesiones e inflamación, sobre todo tras contracciones excéntricas.

¿Qué causa la fatiga muscular?

Es multifactorial: acumulación de fosfato inorgánico (que reduce la fuerza de los puentes y la liberación de Ca2+), de H+ y de ADP, depleción de glucógeno en el esfuerzo prolongado y una menor activación central. La falta de ATP absoluta es rara.

¿Cómo mantiene el músculo liso el tono durante horas con poca energía?

Por el estado de cerrojo: los puentes cruzados que quedan desfosforilados mientras siguen unidos a la actina se separan muy despacio, y la fuerza se mantiene con un recambio mínimo de ATP.

¿Por qué la creatina cinasa sube en las enfermedades musculares?

Es una enzima del citosol de la fibra: cuando el sarcolema se rompe pasa a la sangre. Sube en la rabdomiólisis, las distrofias, las miopatías inflamatorias y tras el ejercicio intenso o las inyecciones intramusculares; la isoforma MB predomina en el miocardio.

Referencias

  1. Hall JE, Hall ME. Guyton y Hall. Tratado de fisiología médica. 14.ª ed. Elsevier; 2021.
  2. Boron WF, Boulpaep EL. Medical Physiology. 3rd ed. Elsevier; 2017.
  3. Costanzo LS. Physiology. 7th ed. Elsevier; 2022.
  4. Barrett KE, Barman SM, Brooks HL, Yuan JXJ. Ganong's Review of Medical Physiology. 26th ed. McGraw-Hill; 2019.
  5. Kandel ER, Koester JD, Mack SH, Siegelbaum SA. Principles of Neural Science. 6th ed. McGraw-Hill; 2021.

Otros sistemas

Premios Nobel sobre este sistema